Provtagningsmaterial:
Vingkanyl med hätta till blododlingsflaska BacT/ALERT®
varuforsorjningen.se/.../kanyl-ving-08x300mm-m-hatta-54770
Slaskrör:
varuforsorjningen.se/.../ror-vakuum-pl-52ml-rod-54019
Slaskrör CVK/SVP: RÖR VAKUUM PL 7/6ML RÖD -
varuforsorjningen.se/.../ror-vakuum-pl-76ml-rod-54018
BacT/ALERT® FA Plus (aerob, grön)
varuforsorjningen.se/.../flaska-odlingbuljong-aerob-gron-72089
BacT/ALERT® FN Plus (anaerob, orange)
varuforsorjningen.se/.../flaska-odlingbuljong-anaerob-orang-72088
BacT/ALERT® PF Plus (aerob, gul)
varuforsorjningen.se/.../...ljong-aerob-gul-72087. Används till mycket svårstuckna patienter där förväntad blodvolym är mindre än 4 mL.
Förberedelse:
Kontrollera alltid hållbarhetstiden på blodflaskorna. Inspektera flaskbotten, botten ska vara grön och vätskan i flaskorna klar.
Skriv ut etiketter och klistra vertikalt i det tomma vita fältet, se bild
regionvastmanland.se/.../...-blododlingsflaska.pdf
Märk flaskorna i förväg i den ordning som dessa ska tas.
Det är viktigt att ordningen följs:
1. Slaskrör (2 mL röd kork)
2. Grön flaska (aerob)
3. Anaerob flaska (orange)
4. Grön flaska (aerob)
5. Anaerob flaska (orange)
Markera rätt volym på flaskorna med en penna:
Aerob flaska (grön)/Anaerob flaska (orange) 10mL
Barnflaska (gul) 4 mL
Tag av skyddshättan, desinficera gummimembranet med klorhexidinsprit och låt lufttorka.
Desinficera slaskrörets membran med klorhexidinsprit och låt lufttorka.
Desinfektera huden:
Desinfektera noga planerat punktionsställe med riklig mängd klorhexidinsprit under minst 5 sek. Huden ska vara fuktig minst 30 sek. Låt huden lufttorka. Vid överkänslighet mot klorhexidin används etanol 70 % alt isopropylalkohol 60 %.
Provtagning:
Blododlingar ska tas först i rörordningen och helst innan insättning av antibiotika. Punktera venen utan att beröra den desinfekterade huden. Fixera nålen med tejp. Ta ett slaskrör om 2 mL (röd kork) före första blododlingsflaskan. Slaskröret kasseras.
Ställ flaskorna på plant underlag och något lägre än punktionsstället. Montera ihop vacutainerhållaren med venprovtagningssetet.
Alla flaskor kan tas vid samma punktion om desinfektion utförts som beskrivits ovan.
Börja med den gröna flaskan. Kontrollera blodflödet och fyll 10 ml blod per flaska (grön och orange). Var beredd att byta flaska. Vänd flaskorna ett par gånger så att innehållet blandas och desinfektera flaskornas gummimembran.
Provtagning från kvarliggande kärlkateter:
Bör undvikas på grund av kontaminationsrisk, förutom vid misstanke om kateterrelaterad infektion. Observera att prov från CVK/SVP måste tas samtidigt med perifer odling och provvolymerna ska vara identiska. Vid flerlumen-CVK bör prov tas ur varje skänkel. Det är mycket viktigt att flaskorna märks så att det tydligt framgår var odlingen är tagen.
6. Desinfektera injektionsmembranet. Gnugga mekaniskt med klorhexidinsprit under 20 sek. Låt lufttorka i 30 sek.
7. Tag ett slaskrör på 5 mL (röd kork) som kasseras. Detta är särskilt viktigt vid tex heparin- eller vancomycinlås då dessa ämnen kan hämma bakterietillväxt i flaskan.
8. Ta blododlingar i rörordning.
PVK
Provtagning från PVK bör undvikas. Vid akuta fall kan dock blododling tas från nysatt PVK (inom 30 minuter). Desinfektera blodflaskans membran och insticksstället enligt rutin för perifer blododling och låt lufttorka. Tag sedan slaskrör och därefter blodflaskor enligt rutin för perifer blododling.
